References

cfpd

Бюллетень физиологии и патологии дыхания

Bulletin Physiology and Pathology of Respiration

1998-5029

Дальневосточный научный центр физиологии и патологии дыхания

10.12737/article_5a9f2dc7802aa6.48982296

cfpd-91

Research Article

Статьи

СТРЕССОРНОЕ ЛЕГКОЕ КРЫС КАК ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ МОДЕЛЬ ЛЕГОЧНОЙ ГИПЕРТЕНЗИИ И ГИПЕРЕМИИ

STRESSING LUNG OF RATS AS AN EXPERIMENTAL MODEL OF PULMONARY HYPERTENSION AND HYPEREMIA

Зиновьев

С. В.

Zinoviev

S. V.

noemail@neicon.ru

Целуйко

С. С.

Tseluyko

S. S.

agma.agma@yandex.ru

Селиверстов

С. С.

Seliverstov

S. S.

anatom-silver@mail.ru

Горбунов

М. М.

Gorbunov

M. M.

agma@nm.ru

Амурская государственная медицинская академияAmur State Medical Academy

2018

18112019

067102110

2019

Зиновьев С.В., Целуйко С.С., Селиверстов С.С., Горбунов М.М.

Zinoviev S.V., Tseluyko S.S., Seliverstov S.S., Gorbunov M.M.

Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://cfpd.elpub.ru/jour/article/view/91

Обзор литературы посвящён особенностям строения лёгких белых крыс. Морфологические особенности лёгких крыс являются экспериментальной моделью в случае изучения развития левожелудочковой лёгочной гипертензии. У крыс имеются особенности строения лёгких, которые отличаются от лёгких человека. Конструкцию кровеносных сосудов лёгких крыс необходимо изучать в случае стрессорного лёгкого. Особенности иннервации лёгочных вен корней лёгких делают левое лёгкое крыс объектом исследования, необходимым для решения проблем современной пульмонологии, кардиологии и морфологии. При анатомическом исследовании выделяется корень диафрагмальной доли, расположенный в каудальной борозде левого лёгкого. При изучении особенностей синтопии и голотопии корня и ворот левого лёгкого половозрелых белых крыс открыт структурный аппарат каудальной борозды, который располагается на протяжении более 11-17 мм на медиальной поверхности диафрагмальной доли левого лёгкого. Структурный аппарат состоит из левой каудальной лёгочной вены, борозды на поверхности диафрагмальной доли левого лёгкого, адвентициальной оболочки каудального бронха, висцеральной плевры, бронхиальных нервов и кровеносных сосудов, инкапсулированных рецепторов. Наличие кардиомиоцитов во внутрилёгочных венах у крыс подтверждает гипотезу о ритмическом, клапаноподобном действии поперечно-полосатой мускулатуры лёгочной венозной стенки во время систолы и возможной роли в лёгочной циркуляции. Данные, полученные при экспериментальном вмешательстве, говорят о клапаноподобном действии поперечно-полосатой мускулатуры лёгочной венозной стенки.

A review of the literature is devoted to the peculiarities of the lung structure of white rats. Morphological features of rat lungs are an experimental model in the case of the study of the development of left ventricular pulmonary hypertension. Rats have the features of the lungs structure, which differ from the lungs of man. The construction of blood vessels of the rat lungs should be studied in the case of a stressor lung. Peculiarities of innervation of the pulmonary veins of rats in the root of the lung make the left lung of rats an object of study necessary for solving the problems of modern pulmonology, cardiology and morphology. In the anatomical study, the root of the diaphragmatic lobe is located in the caudal sulcus of the left lung. In studying the features of the sintopia and holotopia of the root and gates of the left lung of sexually mature rats, the structural apparatus of the caudal sulcus is discovered, which is located for more than 11-17 mm on the medial surface of the diaphragmatic lobe of the left lung. The structural apparatus consists of the left caudal pulmonary vein, furrows on the surface of the diaphragmatic lobe of the left lung, the adventitial shell of the caudal bronchus, the visceral pleura, the bronchial nerves and blood vessels, the encapsulated receptors. The presence of cardiomyocytes in the intrapulmonary veins in rats confirms the hypothesis of a rhythmic, valve-like action of the transverse striated muscle of the pulmonary venous wall during systole and a possible role in pulmonary circulation. Data obtained through experimental intervention indicate the valve-like effect of the striated muscle of the pulmonary venous wall.

стрессорное легкоестресс-индуцированная лёгочная гипертензияструктурные нарушения легкихэкспериментальное моделированиекрысы

stressed lungstress-induced pulmonary hypertensionstructural disorders of the lungsexperimental modelingrats

References1

Егоров Ю.В., Столбова В.И., Кузьмин В.С., Розенштраух Л.В. Влияние антиаритмического препарата III класса ниферидила (РГ-2) на биоэлектрическую активность миокарда легочных вен // Кардиология. 2012. Т.52, №2. C.47-51.

Зиновьев С.В., Селиверстов С.С., Целуйко С.С., Кушнарев В.А. Графическая модель для биопечати структурного аппарата каудальной борозды корня диафрагмальной доли левого легкого аутбредных белых крыс // Амурский медицинский журнал. 2016. №2(14). С.56-59.

Зиновьев С.В. Гистологические и анатомические особенности левого легкого крыс // Современные проблемы гуманитарных и естественных наук: материалы XVIII международной научно-практической конференции. М.: Спецкнига, 2014. C.395-399.

Зиновьев С.В., Целуйко С.С., Селиверстов С.С., Козлова В.С. Левое легкое крыс в качестве модели легочной венозной гиперемии // Ульяновский медико-биологический журнал. 2016. №4 (Приложение). C.32-33.

Зиновьев С.В., Целуйко С.С., Селиверстов С.С., Козлова В.С. Особенности структурной целостности левого легкого у белых крыс // Морфология. 2017. Т.151, №3. C.70-71.

Способ количественной цитохимической оценки хромаффинной реакции эритроцитов крыс при общем охлаждении организма: пат. 2617201 RU / авторы и заявители С.В.Зиновьев, С.С.Целуйко, С.С.Селиверстов, М.А.Горбунов; патентообладатель ГБОУ ВПО «Амурская государственная медицинская академия» МЗ РФ; заявл. 09.03.2016; опубл. 21.04.2017.

Иванова Л.А., Украинская Л.А. Стрессорное легкое: морфофункциональные изменения и их коррекция // Сибирский медицинский журнал. 2015. Т.138, №7. C.68-71.

Кузьмин В.С., Розенштраух Л.В. Современные представления о механизмах возникновения фибрилляции предсердий. Роль миокардиальных рукавов в легочных венах // Успехи физиологических наук. 2010. Т.41, №4. C.3-26.

Кузьмин В.С., Розенштраух Л.В. Автоматическая активность в миокарде легочных вен крысы при действии изопротеренола и бария // Доклады академии наук. 2012. Т.444, №4. C.452-456.

Кузьмин В.С., Розенштраух Л.В. Изучение распространения возбуждения в миокарде легочных вен крысы с использованием метода оптического картирования // Российский физиологический журнал им. И.М.Сеченова. 2012. Т.98, №9. C.1119-1130.

Способ доклинических исследований кардиотропных антиаритмических средств: пат. 2542433 RU / авторы и заявители В.С.Кузьмин, Л.В.Розенштраух, Ю.В.Егоров, Е.Л.Левицкая; патентообладатель ФГБУ РКНПК Минздрава России; заявл. 21.11.2013; опубл. 20.02.2015.

Молдавская А.А., Газиев М.А., Горбунов А.В., Калаев А.А. Топографические особенности лёгких крысы на 19 день внутриутробного развития для последующего экспериментального моделирования // Астраханский медицинский журнал. 2012. Т.7, №1. C.68-71;

Ноздрачев А.Д., Поляков Е.Л. Анатомия крысы (лабораторные животные). СПб: Лань, 2001. 464 с.

Петренко В.М. Строение и топография непарной вены и грудного протока у человека и белой крысы с позиции эмбриогенеза // Фундаментальные исследования. 2009. №10. C.46-47.

Петренко В.М. Анатомия тимуса у белой крысы // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2012. №8. C.10-13.

Петренко В.М. Анатомия лёгких у белой крысы // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2013. №10-3. C.414-417.

Петренко В.М. Анатомия лёгких у дегу // Научное обозрение. Биологические науки. 2017. №3. С.89-92.

Рекомендации ESC/ERS по диагностике и лечению легочной гипертензии 2015 // Российский кардиологический журнал. 2016. №5(133). С.5-64. URL: http://dx.doi.org/10.15829/1560-4071-2016-5-5-64

Тиханов В.И., Зиновьев С.В., Целуйко С.С., Решодько Д.П. Морфологические особенности диафрагмальной доли левого лёгкого крыс при длительной холодовой нагрузке и введении прозерина // Амурский медицинский журнал. 2014. №4(8). C.52-54.

Украинская Л.А., Васильева Л.С. Коррекция даларгином и а-токоферолом стресс-индуцированных нарушений структуры лёгких // Сибирский медицинский журнал (Иркутск). 2002. Т.30, №1. C.34-38.

Украинская Л.А., Васильева Л.С. Ограничение стресс-индуцированной альтерации лёгких путём активации стресс-лимитирующих систем // Сибирский медицинский журнал (Иркутск). 2002. Т.31, №2. C.28-29.

Хабриев Р.У. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М.: Медицина, 2005. 832 с.

Черненко Н.В., Катаев С.И., Кулида Л.В. Средостенные, брыжеечные и паховые лимфатические узлы белых крыс в норме и после удаления селезёнки // Современные проблемы науки и образования. 2015. №2-1. URL: https://www.science-education.ru/ru/article/view?id=17377

Чумасов Е.И., Ворончихин П.А., Коржевский Д.Э. Иннервация сердечной поперечнополосатой мышечной ткани лёгочных вен крысы // Морфология. 2011. Т.140, №6. C.53-55.

Аharinejad S., Egerbacher M., Nourani F., Böck P., Friederici C., Schraufnagel D.E. Pulmonary venous sphincters in cattle // Anat. Rec. 1996. Vol.246, №3. P.356-363.

Aharinejad S., Böck P., Lametschwandtner A., Firbas W. Scanning and transmission electron microscopy of venous sphincters in the rat lung // Anat. Rec. 1992. Vol.233, №4. P.555-568.

Al-Walid I., El-Bermani A.W. Pulmonary noradrenergic innervation of rat and monkey: a comparative study // Thorax. 1978. Vol.33, №2. P.167-174.

Bhatt L.K., Nandakumar K., Bodhankar S.L. Experimental animal models to induce cardiac arrhythmias // Ind. J. Pharm. 2005. Vol.37, №6. P.348-357.

Challice C.E., Wilkens J.L., Chohan K.S. Electrical impulse conduction in pulmonary veins // Biophys. J. 1974. Vol.14, №11. P.901-904.

Chan T.Y. Aconite poisoning // Clin. Toxicol. (Phila). 2009. Vol.47, №4. P.279-285.

Duggan D.J., Bieger D., Tabrizchi R. Neurogenic responses in rat and porcine large pulmonary arteries // Pulm. Circ. 2011. Vol.1, №3. P.419-424.

Davies P, Maddalo F, Reid L. Effects of chronic hypoxia on structure and reactivity of rat lung microvessels // J. Appl. Physiol. 1985. Vol.58, №3. P.795-801.

Davies P., Burke G., Reid L. The structure of the wall of the rat intraacinar pulmonary artery: an electron microscopic study of microdissected preparations // Microvasc. Res. 1986. Vol.32, №1. P.50-63.

El-Bermani A.W., Chang T.L. Cobalt iontophoresis of sensory nerves in the rat lung // Am. J. Anat. 1979. Vol.154, №2. P.277-281.

Gao Y., Raj J.U. Role of veins in regulation of pulmonary circulation // Am. J. Physiol. Lung Cell. Mol. Physiol. 2005.Vol. 288, №2. P.l213-226.

Girman P., Kriz J., Baláž P. Rat experimental transplantation surgery: a practical guide. Springer, 2015. 252 p.

Habertheuer A., Kocher A., Laufer G., Petzelbauer P., Andreas M., Aharinejad S., Ehrlich M., Wiedemann D. Innovative, simplified orthotopic lung transplantation in rats // J. Surg. Res. 2013.Vol.185, №1. P.419-425.

Hislop A., Reid L. Normal structure and dimensions of the pulmonary arteries in the rat // J. Anat. 1978. Vol.125, Pt 1. P.71-83.

Johnson J.E., Perkett E.A., Meyrick B. Pulmonary veins and bronchial vessels undergo remodeling in sustained pulmonary hypertension induced by continuous air embolization into sheep // Exp. Lung Res. 1997. Vol.23, №5. P.459-473.

Jones W.K., Sanchez A., Robbins J. Murine pulmonary myocardium: developmental analysis of cardiac gene expression // Dev. Dyn. 1994. Vol.200, №5. P.117-128.

Jones S.A., Yamamoto M., Tellez J.O., Billeter R., Boyett M.R., Honjo H., Lancaster M.K. Distinguishing properties of cells from the myocardial sleeves of the pulmonary veins: a comparison of normal and abnormal pacemakers // Circ. Arrhythm. Electrophysiol. 2008. Vol.1, №1. P.39-48.

Kay J.M. Comparative morphologic features of the pulmonary vasculature in mammals // Am. Rev. Respir. Dis. 1983. Vol.128, №2(Pt 2). P. 53-57.

Kummer W. Pulmonary vascular innervation and its role in responses to hypoxia size matters // Proc. Am. Thorac. Soc. 2011. Vol.8, №6. P.471-476.

Kuz'min V.S., Rozenshtraukh L.V. Changes in the excitability of the rat pulmonary vein myocardium induced by adrenergic stimulation // Dokl. Biol. Sci. 2012. Vol.443, №1. P.71-74.

Lee D., Fanucchi M. V., Plopper C. G., Fung J., Wexler A.S. Pulmonary architecture in the conducting regions of six rats // Anat. Rec. (Hoboken). 2008. Vol.291, №8. P.916-926.

McLaughlin R.F. Jr., Tyler W.S., Canada R.O. Subgross pulmonary anatomy of the rabbit, rat, and guinea pig, with additional notes on the human lung // Am. Rev. Respir. Dis. 1966. Vol.94, №3. P.380-387.

McLean J.R., B. M. Twaroga,E. H. Bergofsky Vagal nerve endings in visceral pleura and triangular ligaments of the rat lung the adrenergic innervation of pulmonary vasculature in the normal and pulmonary hypertensive rat // J. Auton. Nerv. Syst. 1985. Vol.14, №2. P.111-123.

Melnyk P., Ehrlich J.R., Pourrier M., Villeneuve L., Cha T.J., Nattel S. Comparison of ion channel distribution and expression in cardiomyocytes of canine pulmonary veins versus left atrium // Cardiovasc. Res. 2005. Vol.65, №1. P.104-116.

Michel R.P., Hu F., Meyrick B.O. Myoendothelial junctional complexes in postobstructive pulmonary vasculopathy: a quantitative electron microscopic study // Exp. Lung Res. 1995. Vol. 21, №3. P.437-452.

Morgan D.L., Jokinen M.P., Price H.C., Gwinn W.M., Palmer S.M., Flake G.P. Bronchial and bronchiolar fibrosis in rats exposed to 2,3-pentanedione vapors: implications for bronchiolitis obliterans in humans // Toxicol. Pathol. 2012. Vol.40, №3. P.448-465.

Oakes J.M., Scadeng M., Breen E.C., Marsden A.L., Darquenne C. Rat airway morphometry measured from in situ MRI-based geometric models // J. Appl. Physiol. 2012. Vol.112, №11. P.1921-1931.

Paes de Almeida O., Bohm C.M., de Paula Carvalho M., Paes de Carvalho A. The cardiac muscle in the pulmonary vein of the rat: a morphological and electrophysiological study // J. Morphol. 1975. Vol.145, №4. P.409-433.

Schraufnagel D.E, Agaram N.P., Faruqui A., Jain S., Jain S., Jain L., Ridge K.M., Sznajder J.I. Pulmonary lymphatics and edema accumulation after brief lung injury // Am. J. Physiol. Lung Cell. Mol. Physiol. 2003. Vol.284, №5. P.891-897.

Souma T. The distribution and surface ultrastructure of airway epithelial cells in the rat lung: a scanning electron microscopic study // Arch. Histol. Jpn. 1987. Vol.50, №4. P.419-436.

Takahashi S., Patrick G. Patterns of lymphatic drainage to individual thoracic and cervical lymph nodes in the rat // Lab. Anim. 1987. Vol.21, №1. P.31-34.

Tikhanov V.I., Zinoviev S.V., Reshodko D.P., Rogovchenko E.G. Morphological particularities peripheral division of the light rats in long cold load and introducing indirect acting muscarinic and nicotinic cholinomimetics proserin // The 9th Sino-Russia biomedical forum. Harbin, China, 2012. P.427-428 (in Russian).

Townsley M.I. Structure and composition of pulmonary arteries, capillaries and veins // Compr. Physiol. 2012. Vol.2, №1. P.675-709.

Wang F.B., Liao Y.H., Wang Y.C. Vagal nerve endings in visceral pleura and triangular ligaments of the rat lung // J. Anat. 2017. Vol.230, №2. P.303-314.

Yeh H.C., Schum G.M., Duggan M.T. Anatomic models of the tracheobronchial and pulmonary regions of the rat // Anat. Rec. 1979. Vol.195, №3. P.483-492.

Zinoviev S.V., Seliverstov S.S., Ambroseva N.P., Shakalo Yu.A. Histochemical criteria of morphometric characteristics of the left lung in rats with total cooling of the body // Amurskiy meditsinskiy zhurnal. 2016. №3-4 (15-16). P.137-139.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.