Роль некоторых насыщенных жирных кислот в развитии оксидативного стресса у беременных с COVID-19

Введение. По мере накопления данных о патогенезе COVID-19 у беременных, особое внимание исследователей фокусируется на дестабилизации различных видов метаболизма, включая нарушения липидного профиля и инициацию окислительного стресса.

Цель. Сравнительный анализ содержания пальмитиновой и стеариновой насыщенных жирных кислот (НЖК) в плазме периферической крови и определение их роли в развитии окислительного стресса у беременных со среднетяжелым течением COVID-19 во втором триместре.

Материалы и методы. В исследование типа «случай-контроль» включены 39 женщин с подтвержденным диагнозом COVID- 19 среднетяжелого течения во втором триместре (основная группа) и 40 беременных, не болевших COVID-19 ранее и на момент обследования (контрольная группа). В плазме периферической крови спектрофотометрическим методом изучали концентрации первичных (диеновые конъюгаты) и конечных (активные продукты, реагирующие с тиобарбитуровой кислотой – ТБК-АП) продуктов липопероксидации. Методом иммуноферментного анализа определяли содержание 8-изопростана и общую антиоксидантную способность (АОС). Количественный анализ НЖК выполняли методом газовой хроматографии.

Результаты. В основной группе было выявлено статистически значимое повышение содержания пальмитиновой (в 1,33 раза; p < 0,001) и стеариновой (в 1,34 раза; p < 0,001) НЖК на фоне интенсификации процессов перекисного окисления липидов: роста концентрации диеновых конъюгатов (в 1,9 раза; p < 0,001), ТБК-АП (в 2 раза; p < 0,001) и 8-изопростана (более чем в 2 раза; p < 0,001) при одновременном снижении АОС компонентов плазмы в 1,62 раза (p < 0,001). Определены сильные прямые корреляционные связи уровней пальмитиновой и стеариновой НЖК с содержанием ТБК-АП (rs = 0,72 и rs = 0,68, соответственно; p < 0,001) и 8-изопростаном (rs = 0,74 и rs = 0,72, соответственно; p < 0,001). Установлена статистически значимая обратная связь между концентрацией указанных НЖК и АОС (rs = – 0,70 и rs = – 0,67, соответственно, p < 0,001).

Заключение. Среднетяжелое течение COVID-19 во втором триместре беременности сопровождается статистически значимым повышением концентрации пальмитиновой и стеариновой кислот в плазме периферической крови. Установленные корреляционные взаимосвязи позволяют рассматривать дисбаланс НЖК и прооксидантную нагрузку как единый патогенетический каскад при среднетяжелом течении COVID-19 во втором триместре гестации.

1. Комилова М.О., Зуфарова Ш.А., Юлдашева А.С. Особенности течения вирусной инфекции COVID-19 при беременности // Экономика и социум. 2022. №2-2(93). С.705–710. EDN: CLZLCK.

2. Sun G., Zhang Y., Liao Q., Cheng Y. Blood test results of pregnant covid-19 patients: an updated case-control study // Front. Cell Infect. Microbiol. 2020. Vol.10. Article number:560899. https://doi.org/10.3389/fcimb.2020.560899

3. Ma Y., Nenkov M., Chen Y., Press A.T., Kaemmerer E., Gassler N. Fatty acid metabolism and acyl-CoA synthetases in the liver-gut axis // World J. Hepatol. 2021. Vol.13, №11. P.1512–1533. https://doi.org/10.4254/wjh.v13.i11.1512

4. Korbecki J., Bajdak-Rusinek K. The effect of palmitic acid on inflammatory response in macrophages: an overview of molecular mechanisms // Inflamm. Res. 2019. Vol.68, №11. P.915–932. https://doi.org/10.1007/s00011-019-01273-5

5. Lambertucci R.H., Leandro C.G., Vinolo M.A., Nachbar R.T., Dos Reis Silveira L., Hirabara S.M., Curi R., Pithon-Curi T.C. The effects of palmitic acid on nitric oxide production by rat skeletal muscle: mechanism via superoxide and iNOS activation // Cell Physiol. Biochem. 2012. Vol.30, №5. P.1169–1180. https://doi.org/10.1159/000343307. Erratum in: Cell Physiol. Biochem. 2013. Vol.31, №1. Р.14.

6. Sacks D., Baxter B., Campbell B.C.V., Carpenter J.S., Cognard C., Dippel D., Eesa M., Fischer U., Hausegger K., Hirsch J.A., Shazam Hussain M., Jansen O., Jayaraman M.V., Khalessi A.A., Kluck B.W., Lavine S., Meyers P.M., Ramee S., Rüfenacht D.A., Schirmer C.M., Vorwerk D. Multisociety consensus quality improvement revised consensus statement for endovascular therapy of acute ischemic stroke // Int. J. Stroke. 2018. Vol. 6. P.612–632. https://doi.org/10.1177/1747493018778713

7. Yang C., Lim W., Bazer F.W., Song G. Oleic acid stimulation of motility of human extravillous trophoblast cells is mediated by stearoyl-CoA desaturase-1 activity // Mol. Hum. Reprod. 2017. Vol.23, №11. Р.755–770. https://doi.org/10.1093/molehr/gax051

8. Bicanin Ilic M., Nikolic Turnic T., Ilic I., Nikolov A., Mujkovic S., Rakic D., Jovic N., Arsenijevic N., Mitrovic S., Spasojevic M., Savic J., Mihajlovic K., Jeremic N., Joksimovic Jovic J., Pindovic B., Balovic G., Dimitrijevic A. SARSCoV-2 infection and its association with maternal and fetal redox status and outcomes: a prospective clinical study // J. Clin. Med. 2025. Vol.14, №5. Article number:1555. https://doi.org/10.3390/jcm14051555

9. Ишутина Н.А., Андриевская И.А., Кривощекова Н.А. Характеристика процессов перекисного окисления липидов и антиоксидантной защиты у рожениц при COVID-19 // Бюллетень физиологии и патологии дыхания. 2024. Вып. 91. С.84–89. https://doi.org/10.36604/1998-5029-2024-91-84-89

10. Nobrega G.M., McColl E.R., Antolini-Tavares A., Souza R.T., Cecatti J.G., Costa M.L., Mysorekar I.U. Placentas from SARS-CoV-2 infection during pregnancy exhibit foci of oxidative stress and DNA damage // Am. J. Reprod. Immunol. 2025. Vol.93, №1. Article number:e70034. https://doi.org/10.1111/aji.70034

11. Орел Н.М. Биохимия мембран. Минск: БГУ, 2010. 28 с.

12. Гаврилов В.Г., Гаврилова А.Р., Мажуль Л.М. Анализ методов определения продуктов перекисного окисления липидов в сыворотке крови по тесту с тиобарбитуровой кислотой // Вопросы медицинской химии. 1987. Т. 33, № 1. С. 118–122. EDN: SMPWZH.

13. Folch J., Lees M., Sloane Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues // J. Biol. Chem. 1957. Vol. 226, Iss.1. P.497‒509. PMID: 13428781.

14. Carreau J.P., Dubacq J.P. Adaptation of a macro-scale method to the micro-scale for fatty acid methyl transesterification of biological lipid extracts // J. Chromatogr. A. 1978. Vol.151, Iss.3. P.384‒390. https://doi.org/10.1016/S00219673(00)88356-9

15. Ceja-Galicia Z.A., Cespedes-Acuña C.L.A., El-Hafidi M. Protection strategies against palmitic acid-induced lipotoxicity in metabolic syndrome and related diseases // Int. J. Mol Sci. 2025. Vol.26, №2. Article number:788. https://doi.org/10.3390/ijms26020788

16. Montuschi P., Corradi M., Ciabattoni G., Nightingale J., Kharitonov S.A., Barnes P.J. Increased 8-isoprostane, a marker of oxidative stress, in exhaled condensate of asthma patients // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1999 Vol.160, №1. P.216–220. https://doi.org/10.1164/ajrccm.160.1.9809140

17. Kuang H., Sun X., Liu Y., Tang M., Wei Y., Shi Y., Li R., Xiao G., Kang J., Wang F., Peng J., Xu H., Zhou F. Palmitic acid-induced ferroptosis via CD36 activates ER stress to break calcium-iron balance in colon cancer cells // FEBS J. 2023 Vol.290, №14. P.3664–3687. https://doi.org/10.1111/febs.16772

18. Chong M.F., Hodson L., Bickerton A.S., Roberts R., Neville M., Karpe F., Frayn K.N., Fielding BA. Parallel activation of de novo lipogenesis and stearoyl-CoA desaturase activity after 3 d of high-carbohydrate feeding // Am. J. Clin. Nutr. 2008. Vol.87, №4. P.817–823. https://doi.org/10.1093/ajcn/87.4.817

19. Gomes K.P., Korodimas J., Liu E., Patel N., Yang X., Goruk S., Munhoz J., Field C.J., Gibson S.B. Saturated fatty acids induce lipotoxicity in lymphatic endothelial cells contributing to secondary lymphedema development // EMBO Mol. Med. 2025. Vol.17, №9. P.2384–2408. https://doi.org/10.1038/s44321-025-00286-4