TRIPLET AND REACTIVE OXYGEN SPECIES OF LIVER TISSUE IN EXPERIMENTAL ANIMALS AGAINST COOLING UNDER INTRODUCTION ACETYLCHOLINE IN SITU

The studies to identify the triplet oxygen species in liver homogenate were done; its ability to produce the reactive oxygen species in vitro under introduction to laboratory animals against short-term cold pressure of neostigmine which accumulates in the tissues endogen acetylcholine by anticholinesterase mechanisms. The obtained data were compared with the results of experiments of identifying triplet oxygen species in liver homogenate, its ability to produce reactive oxygen species in vitro under introduction into the liver tissue of acetylcholine in situ. It was found out that short-term cold pressure increases the concentration of triplet oxygen species in liver tissue of animals and increases the ability of liver homogenate to produce reactive oxygen species. The introduction of neostigmine increases only the ability of liver homogenate to produce reactive oxygen species, which is proved by the changes of extinction of the solution containing tetranitrotetrazolium blue of incubation medium. The exogenic introduction of acetylcholine in the tissue of the liver in the molar concentration of 1.1×10^-4 М increases the concentration of the triplet oxygen species, improves the ability of liver homogenate to produce reactive oxygen species, which is proved by the restoration of tetranitrotetrazolium blue in the incubation medium.

холодовой стресс, печень, неостигмин (прозерин), ацетилхолин, триплетная форма кислорода, активные формы кислорода, cold stress, liver, neostigmine (proserine), acetylcholine, triplet oxygen, reactive oxygen species

1. Аничков С.В. Избирательное действие медиаторных средств. Л.: Медицина,1974. 294 с.

2. Карузина И.И., Арчаков А.И. Выделение микросомальной фракции печени и характеристика её окислительных систем // Современные методы в биохимии / под ред. В.Н.Ореховича. М.: Медицина, 1977. С.49-59.

3. Метелица Д.И. Активация кислорода ферментными системами. М.: Наука, 1982. 256 с.

4. Руководство по изучению биологического окисления полярографическим методом / под ред. Г.М.Франка. М.: Наука, 1973. 220 с.

5. Изменение продуктов и субстратных составляющих перекисного окисления липидов в ткани печени на фоне холодовой нагрузки и введении непрямых мускаринчуствительных и никотинчуствительных холиномиметиков / В.И.Тиханов, Н.А.Лосев, В.А.Доровских, Д.П.Решодько, И.В.Тиханов, Р.А.Анохина, Е.Г.Роговченко // Бюл. физиол. и патол. дыхания. 2013. Вып.50. С.61-67.

6. Сравнение окислительной активности прозерина при кратковременной холодовой нагрузке in vivo и in vitro / В.И.Тиханов, Н.А.Лосев, В.А.Доровских, Д.П.Решодько, И.В.Тиханов, Р.А.Анохина, Е.Г.Роговченко // Бюл. физиол. и патол. дыхания. 2013. Вып.49. С.77-81.

7. Патент №2348926 РФ. Поляриметрическое устройство для определения содержания молекулярного кислорода в гомогенатах исследуемых тканей и способ его применения / В.И.Тиханов, Д.П.Решодько, О.Н.Варганов; опубл. 10.03.2009.

8. Brawn K., Fridovich I. Superoxide radical and superoxide dismutases: threat and defense // Acta Physiol. Scand. 1980. Vol.492. Р.9-18.

9. Das U.N. Essential fatty acids: biochemistry, physiology and pathology // Bioctechnol. J. 2006. Vol.1. №4. Р.420-439.

10. Gyermek L. Pharmacology of antimuscarinic agents. CRC Press, 1998. 528 p.

11. Neuronal Nicotinic Receptors. Pharmacology and Therapeutic Opportunities / ed. by S.P.Arneric, J.D.Brioni. Wiley-Liss Inc., New York, 1999. 421 p.

12. Porter N.A. Chemistry of lipid peroxidation // Methods Enzymol. 1984. Vol.105. Р.273-282.

13. Porter N.A., Caldwell S.E., Mills K.R. Mechanisms of free radical oxidation of unsaturated lipids // Lipids. 1995. Vol.30. Р.277-290.

14. Sakac V., Sakac M. Free oxygen radicals and kidney disease // Med. Pregl. 2000. Vol.53, №9-10. Р.463-474.

15. Xu Y., Gu Y., Qian S.Y. An advanced Electron Spin Resonance (ESR) spin-trapping and LC/(ESR)/MS technique for the study of lipid peroxidation // Int. J. Mol. Sci. 2012. Vol.13, №11. Р.14648-14666.