ТРИПЛЕТНАЯ И АКТИВНАЯ ФОРМЫ КИСЛОРОДА ТКАНИ ПЕЧЕНИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ НА ФОНЕ ОХЛАЖДЕНИЯ ПРИ ВВЕДЕНИИ АЦЕТИЛХОЛИНА IN SITU

Проведены исследования по определению триплетной формы кислорода в гомогенате печени, определена его способность продуцировать активные формы кислорода in vitro при введении лабораторным животным на фоне кратковременной холодовой нагрузки неостигмина (прозерин), накапливающего в тканях эндогенный ацетилхолин антихолинэстеразными механизмами. Полученные данные сопоставлялись с результатами экспериментов определения триплетной формы кислорода в гомогенате печени, его способностью продуцировать активные формы кислорода in vitro при введении в ткань печени экзогенного ацетилхолина in situ. Установлено, что кратковременная холодовая нагрузка увеличивает содержание триплетной формы кислорода в ткани печени животных и увеличивает способность гомогената печени продуцировать активные формы кислорода. Введение неостигмина увеличивает только способность гомогената печени продуцировать активные формы кислорода, подтверждением этому служит и изменение экстинкции раствора, содержащего тетранитротетразолиевый синий инкубационной среды. Экзогенное введение ацетилхолина в ткань печени в молярной концентрации 1,1×10^-4 М увеличивает содержание триплетной формы кислорода, увеличивает способность гомогената печени продуцировать активные формы кислорода, что подтверждается увеличением восстановления тетранитротетразолиевого синего в инкубационной среде.

холодовой стресс, печень, неостигмин (прозерин), ацетилхолин, триплетная форма кислорода, активные формы кислорода, cold stress, liver, neostigmine (proserine), acetylcholine, triplet oxygen, reactive oxygen species

1. Аничков С.В. Избирательное действие медиаторных средств. Л.: Медицина,1974. 294 с.

2. Карузина И.И., Арчаков А.И. Выделение микросомальной фракции печени и характеристика её окислительных систем // Современные методы в биохимии / под ред. В.Н.Ореховича. М.: Медицина, 1977. С.49-59.

3. Метелица Д.И. Активация кислорода ферментными системами. М.: Наука, 1982. 256 с.

4. Руководство по изучению биологического окисления полярографическим методом / под ред. Г.М.Франка. М.: Наука, 1973. 220 с.

5. Изменение продуктов и субстратных составляющих перекисного окисления липидов в ткани печени на фоне холодовой нагрузки и введении непрямых мускаринчуствительных и никотинчуствительных холиномиметиков / В.И.Тиханов, Н.А.Лосев, В.А.Доровских, Д.П.Решодько, И.В.Тиханов, Р.А.Анохина, Е.Г.Роговченко // Бюл. физиол. и патол. дыхания. 2013. Вып.50. С.61-67.

6. Сравнение окислительной активности прозерина при кратковременной холодовой нагрузке in vivo и in vitro / В.И.Тиханов, Н.А.Лосев, В.А.Доровских, Д.П.Решодько, И.В.Тиханов, Р.А.Анохина, Е.Г.Роговченко // Бюл. физиол. и патол. дыхания. 2013. Вып.49. С.77-81.

7. Патент №2348926 РФ. Поляриметрическое устройство для определения содержания молекулярного кислорода в гомогенатах исследуемых тканей и способ его применения / В.И.Тиханов, Д.П.Решодько, О.Н.Варганов; опубл. 10.03.2009.

8. Brawn K., Fridovich I. Superoxide radical and superoxide dismutases: threat and defense // Acta Physiol. Scand. 1980. Vol.492. Р.9-18.

9. Das U.N. Essential fatty acids: biochemistry, physiology and pathology // Bioctechnol. J. 2006. Vol.1. №4. Р.420-439.

10. Gyermek L. Pharmacology of antimuscarinic agents. CRC Press, 1998. 528 p.

11. Neuronal Nicotinic Receptors. Pharmacology and Therapeutic Opportunities / ed. by S.P.Arneric, J.D.Brioni. Wiley-Liss Inc., New York, 1999. 421 p.

12. Porter N.A. Chemistry of lipid peroxidation // Methods Enzymol. 1984. Vol.105. Р.273-282.

13. Porter N.A., Caldwell S.E., Mills K.R. Mechanisms of free radical oxidation of unsaturated lipids // Lipids. 1995. Vol.30. Р.277-290.

14. Sakac V., Sakac M. Free oxygen radicals and kidney disease // Med. Pregl. 2000. Vol.53, №9-10. Р.463-474.

15. Xu Y., Gu Y., Qian S.Y. An advanced Electron Spin Resonance (ESR) spin-trapping and LC/(ESR)/MS technique for the study of lipid peroxidation // Int. J. Mol. Sci. 2012. Vol.13, №11. Р.14648-14666.