Оценка мембранного потенциала митохондрий иммунокомпетентных клеток крови при бронхиальной астме у детей в зависимости от контролируемости течения заболевания

Цель. Изучение функционального состояния иммунокомпетентных клеток крови (ИКК) посред­ством оценки мембранного потенциала митохондрий (МПМ) при бронхиальной астме (БА) у детей в зависимости от контролируемости течения заболевания.

Материалы и методы. Обследовано 167 детей, страдающих БА, в возрасте от 1 до 17 лет, сформировано две группы: 1 - контролируемое течение БА (n=70), 2 - частично контроли­руемое и неконтролируемое течение БА (n=97). Оценка функционально-энергетического статуса ИКК проводилась методом проточной цитометрии с определением МПМ, использованием красителя JC-1.

Результаты. Доля клеток со сниженным МПМ у больных БА в сравнении с условно здоровыми детьми была выше во всех пулах: лимфо­цитах (46,1% против 34,0%), моноцитах (12,0% против 9,0%), гранулоцитах (11,3% против 7,0%). Обнаружен более высокий процент клеток со сниженным МПМ в пулах моноцитов (15,4% против 8,8%) и гранулоцитов (13,8% против 6,7%) при неконтролируемом течении БА. Разработан и запатентован «Способ комплексной оценки энергетической обеспеченности иммунокомпетентных клеток крови». Согласно этой методике установлены сте­пени энергетического дефицита, релевантные контролю течения БА: в 1 группе энергетический дефицит отсут­ствует в 12,9% случаев, первая степень дефицита в 40%; вторая - в 20%, третья - в 27,1%; во второй группе - 11,3, 15,5, 42,2 и 31,0% случаев, соответственно.

Заключение. Использование разработанного способа комплекс­ной оценки энергетической обеспеченности ИКК крови, как дополнительного к утвержденным медицинским стан­дартам метода, выполненного технически в быстрые сроки и с высокой точностью, позволяет провести раннюю доклиническую диагностику энергетически дефицитных состояний ИКК при БА; по степени выявленных нару­шений обоснованно определить выбор, объем необходимой терапии и оценить эффективность лечения.

1. Nguyen-Thi-Dieu T., Le-Thi-Thu H., Duong-Quy S. The profile of leucocytes, CD3+, CD4+, and CD8+ T cells, and cytokine concentrations in peripheral blood of children with acute asthma exacerbation // J. Int. Med. Res. 2017. Vol.45, Iss.6. P.1658-1669. https://doi.org/10.1177/0300060516680439

2. Huber M., Lohoff M. Change of paradigm: CD8+ T cells as important helper for CD4+ T cells during asthma and autoimmune encephalomyelitis // Allergo J. Int. 2015. Vol.24, Iss.1. P.8-15. https://doi.org/10.1007/s40629-015-0038-4

3. Lourenço O., Fonseca A.M., Taborda-Barata L. Human CD8+ T Cells in Asthma: Possible Pathways and Roles for NK-Like Subtypes // Front. Immunol. 2016. Vol.7. Article number: 638. https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00638

4. Kim J.H., Jang Y.J. Role of Natural Killer Cells in Airway Inflammation // Allergy Asthma Immunol. Res. 2018. Vol.10, Iss.5. P.448-456. https://doi.org/10.4168/aair.2018.10.5.448

5. Hilvering B., Hinks T.S.C., Stoger L., Marchi E., Salimi M., Shrimanker R., Liu W., Chen W., Luo J., Go S., Powell T., Cane J., Thulborn S., Kurioka A., Leng T., Matthews J., Connolly C., Borg C., Bafadhel M., Willberg C.B., Ramasamy A., Djukanovic R., Ogg G., Pavord I.D., Klenerman P., Xue L. Synergistic activation of pro-inflammatory type-2 CD8+ T lymphocytes by lipid mediators in severe eosinophilic asthma // Mucosal Immunol. 2018. Vol.11, Iss.5. P.1408-1419. https://doi.org/10.1038/s41385-018-0049-9

6. Pascual M., Suzuki M., Isidoro-Garcia M., Padron J., Turner T., Lorente F., Davila I., Greally J.M. Epigenetic changes in B lymphocytes associated with house dust mite allergic asthma // Epigenetics. 2011. Vol.6, Iss.9. P.1131-1137. https://doi.org/10.4161/epi.6.9.16061

7. Luo J., Guo H., Liu Z., Peng T., Hu X., Han M., Yang X., Zhou X., Li H. Analysis of Peripheral B Cell Subsets in Patients With Allergic Rhinitis // Allergy Asthma Immunol. Res. 2018. Vol.10, Iss.3. P.236-243. https://doi.org/10.4168/aair.2018.10.3.236

8. Фрелих Г.А., Поломеева Н.Ю., Васильев А.С., Удут В.В. Современные методы оценки функционального состояния митохондрий // Сибирский медицинский журнал (Томск). 2013. Т.28, №3. С.7-13. EDN: TUJJHZ.

9. Angajala A., Lim S., Phillips J.B., Kim J.H., Yates C., You Z., Tan M. Diverse roles of mitochondria in immune responses: novel insights into immuno-metabolism // Front. Immunol. 2018. Vol.9. Article number: 1605. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.01605

10. Vodounon C.A., Chabi C.B, Skibo Y.V., Ezin V., Aikou N., Kotchoni S.O., Akpona S.A., Baba-Moussa L., Abramova Z.I. Influence of the programmed cell death of lymphocytes on the immunity of patients with atopic bronchial asthma // Allergy Asthma Clin. Immunol. 2014. Vol.10, Iss.1. Article number: 14. https://doi.org/10.1186/1710-1492-10-14

11. Денисенко Ю.К., Новгородцева Т.П., Кондратьева Е.В., Жукова Н.В., Антонюк М.В., Кнышова В.В., Минеева Е.Е.. Морфофункциональное состояние митохондрий клеток крови при бронхиальной астме // Клиническая медицина. 2015. Т.93, №10. С.47-51. EDN: UYABQN.

12. Денисенко Ю.К., Новгородцева Т.П., Антонюк М.В., Гвозденко Т.А., Жукова Н.В., Виткина Т.И., Гельцер Б.И. Патогенетические особенности мембранных нарушений иммунокомпетентных клеток при сочетанном течении бронхиальной астмы и хронической обструктивной болезни легких // Пульмонология. 2018. Т.28, №6. С.647654. EDN: RAJVWP. https://doi.org/10.18093/0869-0189-2018-28-6-647-654

13. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению бронхиальной астмы. М.: Российское респираторное общество, 2021. URL: https://www.spulmo.ru/upload/kr/BA_2021.pdf

14. Ляпина С.А., Федотова Г.Г. Реактивные изменения нейтрофилов при бронхолегочных заболеваниях // Современные проблемы науки и образования. 2018. №6. С.66. EDN: YVMKOT.